可能為誤操作，請(qǐng)按照說(shuō)明書操作步驟重復(fù)檢測(cè)，并確認(rèn)樣本中添加的裂解和萃取試劑濃度在推薦范圍內(nèi)。也可能是檢測(cè)卡超過(guò)效期，請(qǐng)使用效期內(nèi)的檢測(cè)卡。

當(dāng)樣本濃度低于檢測(cè)卡的工作濃度范圍下限時(shí)，可降低樣本稀釋倍數(shù)，稀釋后重新檢測(cè)；當(dāng)樣本濃度高于檢測(cè)卡的工作濃度范圍上限時(shí)，可以進(jìn)行二次稀釋使其濃度符合檢測(cè)卡的工作范圍。

說(shuō)明待測(cè)樣本中不含有標(biāo)簽蛋白。檢查是否使用了與待測(cè)樣本對(duì)應(yīng)的檢測(cè)卡，或者通過(guò)ELISA或WB方法驗(yàn)證標(biāo)簽蛋白的存在。

編輯質(zhì)?？梢酝ㄟ^(guò)多種方法轉(zhuǎn)染到目的細(xì)胞中，包括病毒感染（如慢病毒、腺病毒等）、電穿孔、脂質(zhì)體介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染等。選擇哪種方法取決于細(xì)胞類型、實(shí)驗(yàn)?zāi)康暮蛯?shí)驗(yàn)條件。

驗(yàn)證編輯的效果通常涉及對(duì)編輯后的細(xì)胞進(jìn)行基因組測(cè)序、PCR擴(kuò)增和測(cè)序、表型分析等。這些方法可以幫助確定哪些基因或基因組的哪些位置被成功編輯，并評(píng)估編輯的效率和準(zhǔn)確性。

捕獲區(qū)段大，可以達(dá)到幾百M(fèi)B，遠(yuǎn)超PCR方案和MIP方案，同時(shí)根據(jù)探針的原理其均一性很好，均一性是評(píng)價(jià)捕獲技術(shù)很關(guān)鍵的參數(shù)，均一性好后續(xù)測(cè)序成本就會(huì)下降。

封阻引物在使用過(guò)程中需要注意設(shè)計(jì)合理性、合成質(zhì)量、濃度和添加量、保存和穩(wěn)定性、操作規(guī)范性、與測(cè)序平臺(tái)的兼容性以及特異性驗(yàn)證等方面的問(wèn)題。遵循這些注意事項(xiàng)將有助于確保封阻引物在捕獲測(cè)序中發(fā)揮最佳效果。

質(zhì)量問(wèn)題：如純度不高、序列錯(cuò)誤等，可能導(dǎo)致測(cè)序結(jié)果不準(zhǔn)確。

設(shè)計(jì)問(wèn)題：如果接頭引物設(shè)計(jì)不合理，可能導(dǎo)致與DNA樣本或測(cè)序平臺(tái)的結(jié)合效果不佳，影響測(cè)序效率。

操作問(wèn)題：在制備文庫(kù)或進(jìn)行測(cè)序時(shí)，接頭引物的操作不當(dāng)也可能導(dǎo)致問(wèn)題，如濃度不準(zhǔn)確、混合不均勻等。

發(fā)貨形式默認(rèn)1 mg/管發(fā)貨，不分裝?？蛻羰盏胶罂梢匀芙夥盅b冷凍，一次取用一管。

ddH2和生理鹽水

鏈霉親和素能在高溫、極端pH和存在變性劑的條件下保持生物活性，是自然界中最穩(wěn)定的蛋白質(zhì)之一。

是的，重組鏈霉親和素在大腸桿菌中表達(dá)，經(jīng)過(guò)嚴(yán)格的純化和質(zhì)控過(guò)程，確保產(chǎn)品的安全性和高效性。